吊瓜组培苗快繁技术体系的建立阮建单雷范仲学杨连群焦其庆彭振英摘要：为建立吊瓜组培苗快繁技术体系，实现大规模生产优质吊瓜种苗，本试验以“越蒌2号”为材料，探讨不同激素配比的初代培养基、继代培养基、生根培养基对离体茎段腋芽诱导、茎蔓生根的影响和炼苗移栽方式对组培苗成活率的影响。结果表明，初代培養基中6-BA、IAA组合浓度为0.5、0.2mg/L时，腋芽诱导出苗率高达99%；生根培养基IBA浓度为0.5mg/L时生根率为88%，平均侧根数最多；诱导苗炼苗后成活率可达90%，可以实现吊瓜苗的批量生产。关键词：吊瓜；组织培养；快繁；激素配比；腋芽诱导：S567.904.3文献标识号：A：1001-4942（2018）05-0046-05AbstractInordertoovercomethetechnicallimitationoftissuecultureandrapidpropagationandrealizethelarge-scaleproductionofhigh-qualityseedlingsofTrichosantheskirilowiiMaxim，thefirstgenerationofvirus-freeTrichosantheskirilowiiseedlingsofthevarietyYuelou2wasusedasthematerial.Afterinducingaxillarybudstoseedlings，weinducedrootwithseedlingsdirectly，skippingthetraditionalsubcultureprocess.Theresultsshowedthattheemergencerateofaxillarybudswasashighas99%undertheconcentrationof6-BAas0.5mg/LandIAAas0.2mg/L.WhentheconcentrationofIBAwas0.5mg/L，therootingratewas88%，andtheaveragenumberoflateralrootswasthehighest.Thesurvivalrateofrefinedseedlingscouldreach90%.Inconclusion，themassproductionofTrichosantheskirilowiiMaximseedlingscouldberealizedbyusingthisrapidprogationtechnologysystem.KeywordsTrichosantheskirilowiiMaxim；Tissueculture；Rapidpropagation；Hormonecombination；Axillarybudinduction吊瓜学名栝楼（TrichosantheskirilowiiMaxim），葫芦科多年生藤本植物，又名瓜蒌[1，2]。其块根肥厚[3]，根与果实均可入药，具有止泻、抗菌、消炎、降低胆固醇、调节免疫力、抗衰老与抗癌的作用[4，5]。吊瓜籽富含植物脂肪和微量元素，是食用瓜子中的佳品[6，7]。因此吊瓜是经济价值较高的药食两用植物[8，9]。吊瓜喜光耐阴，不耐寒与旱，怕涝，适宜在深厚、疏松、湿润的土壤中生长[10]。利用种子播种方式进行繁殖时，后代分离严重、一致性差、病毒病发病率高、选育周期长[11]；而采用块根营养繁殖方式易受多种虫害与病害的侵袭[12，13]，其中以病毒侵害最为严重，感病率可达100%，致使果实产量与品质退化，两种方式都直接影响瓜农经济效益[14，15]。为保证吊瓜的优良品性，人们利用茎尖脱毒组培技术生产吊瓜脱毒苗[16]，但因其操作难度大，出苗率低且周期长，极大地限制了脱毒苗的数量[17]。因此，本试验利用离体茎段的腋芽来诱导组培苗，以期建立吊瓜组培苗快繁技术体系并为实现吊瓜脱毒苗的批量生产提供技术支持。1材料与方法1.1试验材料供试吊瓜品种为“越蒌2号”。移栽所用基质由珍珠岩、蛭石、草炭土（体积比1∶1∶1）调配，1000倍多菌灵溶液消毒。1.2试验方法1.2.1离体茎段腋芽的消毒方法选取生长10d以内的吊瓜幼嫩藤状茎顶部，除去藤状茎上的叶片与卷须，将主茎剪成一叶茎段（上短下长），流水冲洗20～30min。于超净工作台内，用洁净的干纱布吸去茎段表面的水分，75%酒精浸泡15s后取出，用蒸馏水冲洗2～3遍，再用0.1%的HgCl2溶液浸泡8～10min，其间不断摇动，弃去HgCl2溶液用无菌蒸馏水冲洗4～5遍。将茎段表面水分晾干后剪去茎段两端少许备用。1.2.2不同培养基配制试验所用不同培养基设计见表1。1.2.3离体茎段诱导与茎蔓生根将消毒后的离体茎段按照生物学极性方向接种到不同初代培养基配方下，每配方为1个处理，每处理接种6瓶，每瓶接种5～8个茎段。后置于25℃左右、光照12h/d、黑暗12h/d的环境下进行培养。1周后观察不同初代培养基处理的茎段腋芽诱导情况并计算诱导率。待初代培养基中腋芽长至4～5节带叶茎蔓后，将带叶茎蔓剪成一叶茎段，去掉叶子后接种到继代培养基中，每瓶接种5～8个茎蔓。观察不同继代培养基配方处理的茎蔓生长情况。待继代培养苗长至6～8节后，将茎段剪下接种到生根培养基中，每瓶接种2...